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Validation of a novel double control quantitative copy number PCR method to quantify off-target transgene integration after CRISPR-induced DNA modification

  • In order to improve a recently established cell-based assay to assess the potency of botulinum neurotoxin, neuroblastoma-derived SiMa cells and induced pluripotent stem-cells (iPSC) were modified to incorporate the coding sequence of a reporter luciferase into a genetic safe harbor utilizing CRISPR/Cas9. A novel method, the double-control quantitative copy number PCR (dc-qcnPCR), was developed to detect off-target integrations of donor DNA. The donor DNA insertion success rate and targeted insertion success rate were analyzed in clones of each cell type. The dc-qcnPCR reliably quantified the copy number in both cell lines. The probability of incorrect donor DNA integration was significantly increased in SiMa cells in comparison to the iPSCs. This can possibly be explained by the lower bundled relative gene expression of a number of double-strand repair genes (BRCA1, DNA2, EXO1, MCPH1, MRE11, and RAD51) in SiMa clones than in iPSC clones. The dc-qcnPCR offers an efficient and cost-effective method to detect off-targetIn order to improve a recently established cell-based assay to assess the potency of botulinum neurotoxin, neuroblastoma-derived SiMa cells and induced pluripotent stem-cells (iPSC) were modified to incorporate the coding sequence of a reporter luciferase into a genetic safe harbor utilizing CRISPR/Cas9. A novel method, the double-control quantitative copy number PCR (dc-qcnPCR), was developed to detect off-target integrations of donor DNA. The donor DNA insertion success rate and targeted insertion success rate were analyzed in clones of each cell type. The dc-qcnPCR reliably quantified the copy number in both cell lines. The probability of incorrect donor DNA integration was significantly increased in SiMa cells in comparison to the iPSCs. This can possibly be explained by the lower bundled relative gene expression of a number of double-strand repair genes (BRCA1, DNA2, EXO1, MCPH1, MRE11, and RAD51) in SiMa clones than in iPSC clones. The dc-qcnPCR offers an efficient and cost-effective method to detect off-target CRISPR/Cas9-induced donor DNA integrations.zeige mehrzeige weniger

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Verfasserangaben:Brit-Maren SchjeideORCiDGND, Maren SchenkeORCiDGND, Bettina SeegerORCiD, Gerhard PüschelORCiDGND
DOI:https://doi.org/10.3390/mps5030043
ISSN:2409-9279
Pubmed ID:https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35736544
Titel des übergeordneten Werks (Englisch):Methods and protocols : M&Ps
Verlag:MDPI
Verlagsort:Basel, Schweiz
Sonstige beteiligte Person(en):Antónia Monteiro
Publikationstyp:Wissenschaftlicher Artikel
Sprache:Englisch
Datum der Erstveröffentlichung:25.05.2022
Erscheinungsjahr:2022
Datum der Freischaltung:27.09.2022
Freies Schlagwort / Tag:CRISPR editing validation; copy number analyses; homologous recombination deficiency; homology-directed repair
Band:5
Ausgabe:3
Aufsatznummer:43
Seitenanzahl:14
Erste Seite:1
Letzte Seite:14
Fördernde Institution:German Federal Ministry of Education and Research
Fördernde Institution:Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, German Research Foundation)
Fördernummer:031L0132A/B
Organisationseinheiten:Mathematisch-Naturwissenschaftliche Fakultät / Institut für Ernährungswissenschaft
Extern / Extern
DDC-Klassifikation:5 Naturwissenschaften und Mathematik / 57 Biowissenschaften; Biologie / 570 Biowissenschaften; Biologie
6 Technik, Medizin, angewandte Wissenschaften / 61 Medizin und Gesundheit / 610 Medizin und Gesundheit
Peer Review:Referiert
Fördermittelquelle:Publikationsfonds der Universität Potsdam
Publikationsweg:Open Access / Gold Open-Access
DOAJ gelistet
Lizenz (Deutsch):License LogoCC-BY - Namensnennung 4.0 International
Externe Anmerkung:Zweitveröffentlichung in der Schriftenreihe Postprints der Universität Potsdam : Mathematisch-Naturwissenschaftliche Reihe ; 1269
Verstanden ✔
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