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In dieser Arbeit wurden Nano-Elektroden-Arrays zur Einzel-Objekt-Immobilisierung mittels Dielektrophorese verwendet. Hierbei wurden fluoreszenzmarkierte Nano-Sphären als Modellsystem untersucht und die gewonnenen Ergebnisse auf biologische Proben übertragen. Die Untersuchungen in Kombination mit verschiedenen Elektrodenlayouts führten zu einer deterministischen Vereinzelung der Nano-Sphären ab einem festen Größenverhältnis zwischen Nano-Sphäre und Durchmesser der Elektrodenspitzen. An den Proteinen BSA und R-PE konnte eine dielektrophoretische Immobilisierung ebenfalls demonstriert und R-PE Moleküle zur Vereinzelung gebracht werden. Hierfür war neben einem optimierten Elektrodenlayout, das durch Feldsimulationen den Feldgradienten betreffend gesucht wurde, eine Optimierung der Feldparameter, insbesondere von Spannung und Frequenz, erforderlich.
Neben der Dielektrophorese erfolgten auch Beobachtungen anderer Effekte des elektrischen Feldes, wie z.B. Elektrolyse an Nano-Elektroden und Strömungen über dem Elektroden-Array, hervorgerufen durch Joulesche Wärme und AC-elektroosmotischen Fluss. Zudem konnte Dielektrophorese an Silberpartikeln beobachtet werden und mittels Fluoreszenz-, Atom-Kraft-, Raster-Elektronen-Mikroskopie und energiedispersiver Röntgenspektroskopie untersucht werden. Schließlich wurden die verwendeten Objektive und Kameras auf ihre Lichtempfindlichkeit hin analysiert, so dass die Vereinzelung von Biomolekülen an Nano-Elektroden nachweisbar war.
Festzuhalten bleibt also, dass die Vereinzelung von Nano-Objekten und Biomolekülen an Nano-Elektroden-Arrays gelungen ist. Durch den parallelen Ansatz erlaubt dies, Aussagen über das Verhalten von Einzelmolekülen mit guter Statistik zu treffen.
Alkylphospholipids are a novel class of antineoplastic drugs showing remarkable therapeutic potential. Among them, erufosine (EPC3) is a promising drug for the treatment of several types of tumors. While EPC3 is supposed to exert its function by interacting with lipid membranes, the exact molecular mechanisms involved are not known yet. In this work, we applied a combination of several fluorescence microscopy and analytical chemistry approaches (i.e., scanning fluorescence correlation spectroscopy, line-scan fluorescence correlation spectroscopy, generalized polarization imaging, as well as thin layer and gas chromatography) to quantify the effect of EPC3 in biophysical models of the plasma membrane, as well as in cancer cell lines. Our results indicate that EPC3 affects lipid–lipid interactions in cellular membranes by decreasing lipid packing and increasing membrane disorder and fluidity. As a consequence of these alterations in the lateral organization of lipid bilayers, the diffusive dynamics of membrane proteins are also significantly increased. Taken together, these findings suggest that the mechanism of action of EPC3 could be linked to its effects on fundamental biophysical properties of lipid membranes, as well as on lipid metabolism in cancer cells.