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Kaliumionen (K<sup>+) sind die am häufigsten vorkommenden anorganischen Kationen in Pflanzen. Gemessen am Trockengewicht kann ihr Anteil bis zu 10% ausmachen. Kaliumionen übernehmen wichtige Funktionen in verschiedenen Prozessen in der Pflanze. So sind sie z.B. essentiell für das Wachstum und für den Stoffwechsel. Viele wichtige Enzyme arbeiten optimal bei einer K<sup>+ Konzentration im Bereich von 100 mM. Aus diesem Grund halten Pflanzenzellen in ihren Kompartimenten, die am Stoffwechsel beteiligt sind, eine kontrollierte Kaliumkonzentration von etwa 100 mM aufrecht. Die Aufnahme von Kaliumionen aus dem Erdreich und deren Transport innerhalb der Pflanze und innerhalb einer Pflanzenzelle wird durch verschiedene Kaliumtransportproteine ermöglicht. Die Aufrechterhaltung einer stabilen K<sup>+ Konzentration ist jedoch nur möglich, wenn die Aktivität dieser Transportproteine einer strikten Kontrolle unterliegt. Die Prozesse, die die Transportproteine regulieren, sind bis heute nur ansatzweise verstanden. Detailliertere Kenntnisse auf diesem Gebiet sind aber von zentraler Bedeutung für das Verständnis der Integration der Transportproteine in das komplexe System des pflanzlichen Organismus. In dieser Habilitationsschrift werden eigene Publikationen zusammenfassend dargestellt, in denen die Untersuchungen verschiedener Regulationsmechanismen pflanzlicher Kaliumkanäle beschrieben werden. Diese Untersuchungen umfassen ein Spektrum aus verschiedenen proteinbiochemischen, biophysikalischen und pflanzenphysiologischen Analysen. Um die Regulationsmechanismen grundlegend zu verstehen, werden zum einen ihre strukturellen und molekularen Besonderheiten untersucht. Zum anderen werden die biophysikalischen und reaktionskinetischen Zusammenhänge der Regulationsmechanismen analysiert. Die gewonnenen Erkenntnisse erlauben eine neue, detailliertere Interpretation der physiologischen Rolle der Kaliumtransportproteine in der Pflanze.
Exendin-4 is a pharmaceutical peptide used in the control of insulin secretion. Structural information on exendin-4 and related peptides especially on the level of quaternary structure is scarce. We present the first published association equilibria of exendin-4 directly measured by static and dynamic light scattering. We show that exendin-4 oligomerization is pH dependent and that these oligomers are of low compactness. We relate our experimental results to a structural hypothesis to describe molecular details of exendin-4 oligomers. Discussion of the validity of this hypothesis is based on NMR, circular dichroism and fluorescence spectroscopy, and light scattering data on exendin-4 and a set of exendin-4 derived peptides. The essential forces driving oligomerization of exendin-4 are helix–helix interactions and interactions of a conserved hydrophobic moiety. Our structural hypothesis suggests that key interactions of exendin-4 monomers in the experimentally supported trimer take place between a defined helical segment and a hydrophobic triangle constituted by the Phe22 residues of the three monomeric subunits. Our data rationalize that Val19 might function as an anchor in the N-terminus of the interacting helix-region and that Trp25 is partially shielded in the oligomer by C-terminal amino acids of the same monomer. Our structural hypothesis suggests that the Trp25 residues do not interact with each other, but with C-terminal Pro residues of their own monomers.
Exendin-4 is a pharmaceutical peptide used in the control of insulin secretion. Structural information on exendin-4 and related peptides especially on the level of quaternary structure is scarce. We present the first published association equilibria of exendin-4 directly measured by static and dynamic light scattering. We show that exendin-4 oligomerization is pH dependent and that these oligomers are of low compactness. We relate our experimental results to a structural hypothesis to describe molecular details of exendin-4 oligomers. Discussion of the validity of this hypothesis is based on NMR, circular dichroism and fluorescence spectroscopy, and light scattering data on exendin-4 and a set of exendin-4 derived peptides. The essential forces driving oligomerization of exendin-4 are helix–helix interactions and interactions of a conserved hydrophobic moiety. Our structural hypothesis suggests that key interactions of exendin-4 monomers in the experimentally supported trimer take place between a defined helical segment and a hydrophobic triangle constituted by the Phe22 residues of the three monomeric subunits. Our data rationalize that Val19 might function as an anchor in the N-terminus of the interacting helix-region and that Trp25 is partially shielded in the oligomer by C-terminal amino acids of the same monomer. Our structural hypothesis suggests that the Trp25 residues do not interact with each other, but with C-terminal Pro residues of their own monomers.