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The process of leaf senescence consists of the final stage of leaf development. It has evolved as a mechanism to degrade macromolecules and micronutrients and remobilize them to other developing parts of the plant; hence it plays a central role for the survival of plants and crop production. During senescence, a range of physiological, morphological, cellular, and molecular events occur, which are generally referred to as the senescence syndrome that includes several hallmarks such as visible yellowing, loss of chlorophyll and water content, increase of ion leakage and cell death, deformation of chloroplast and cell structure, as well as the upregulation of thousands of so-called senescence-associated genes (SAGs) and downregulation of photosynthesis-associated genes (PAGs). This chapter is devoted to methods characterizing the onset and progression of leaf senescence at the morphological, physiological, cellular, and molecular levels. Leaf senescence normally progresses in an age-dependent manner but is also induced prematurely by a variety of environmental stresses in plants. Focused on the hallmarks of the senescence syndrome, a series of protocols is described to asses quantitatively the senescence process caused by developmental cues or environmental perturbations. We first briefly describe the senescence process, the events associated with the senescence syndrome, and the theories and methods to phenotype senescence. Detailed protocols for monitoring senescence in planta and in vitro, using the whole plant and the detached leaf, respectively, are presented. For convenience, most of the protocols use the model plant species Arabidopsis and rice, but they can be easily extended to other plants.
Relationships between different measures of succulence and Crassulacean acid metabolism (CAM; defined here as nocturnal increases in tissue acidity) were investigated in leaves of ten species of Sansevieria under greenhouse conditions. CAM was found in seven of the ten species investigated, and CAM correlated negatively with leaf thickness and leaf hydrenchyma/chlorenchyma ratio. Similarly, CAM correlated negatively with leaf water content, but only when expressed on a fresh mass basis. CAM was not correlated with "mesophyll succulence", but weakly with leaf chlorophyll concentration. These results indicate that CAM is associated more with "all-cell succulence" and not with the amount of leaf hydrenchyma in the genus Sansevieria. The findings of this study emphasize the importance of defining the nature of "leaf succulence" in studies of photosynthetic pathways and leaf morphology. Evidence is also provided that CAM and succulence arose multiple times in the genus Sansevieria.
Phytol aus dem Chlorophyllabbau ist limitierend für die Tocopherol (Vitamin E)-Synthese Als Bestandteil von Chlorophyll ist Phytol das am häufigsten vorkommende Isoprenoid in der Biosphäre. Große Mengen an Chlorophyll werden jährlich degradiert und dabei wird Phytol freigesetzt, über dessen Verbleib jedoch wenig bekannt ist. Es sollte der Nachweis erbracht werden, dass im Zuge des Chlorophyllabbaus hydrolysiertes Phytol Eingang in die Synthese anderer Phytylderivate findet. Während der Gehalt an Tocopherol, Chlorophyll und Fettsäurephytylester entwicklungs- bzw. seneszenzabhängig ist, bleibt der Gehalt an Phyllochinon etwa gleich. Auch in Samen ist der Gehalt von Tocopherol, Chlorophyll und Fettsäurephytylester entwicklungsabhängig. Es wurde gefolgert, dass nur die Synthesen von Tocopherol und Fettsäurephytylester während des Chlorophyllabbaus stimuliert werden. Daher sollten Mutanten analysiert werden, welche im Chlorophyllabbau inhibiert sind. Da Chlorophyllase den ersten Schritt des Chlorophyllabbaus katalysiert, wurden zwei unabhängige T-DNA-Insertionsmutanten für Chlorophyllase1 (CHL1) und eine T-DNA-Insertionsmutante für Chlorophyllase2 (CHL2) identifiziert und eine chl1-1chl2-Doppelmutante erzeugt. Die Analyse der Chlorophyllidanteile ergab eine im Vergleich zum Wildtyp starke Reduktion in den chl1-Mutanten, während der Chlorophyllidanteil von chl2 ähnlich hoch dem Wildtyp ist. Der Chlorophyllidanteil sich entwickelnder chl1-1chl2-Pflanzen nahm in der Seneszenz zu. Die Chlorophyllasemutanten zeigten kein verändertes Seneszenzverhalten im Vergleich zu den Wildtypen. Ferner konnte in den chl1-Linien nur geringfügig weniger Tocopherol und Fettsäurephytylester als in den Wildtypen nachgewiesen werden. Auch der Tocopherolgehalt der Samen war in den Chlorophyllasemutanten unverändert zu den Wildtypen. Aufgrund dessen wurde gefolgert, dass neben den Chorophyllasen CHL1 und CHL2 weitere Chlorophyllhydrolasen in Samen und Blättern von Arabidopsis existieren. Daher wurde auf andere Mutanten zurückgegriffen, in denen der Chlorophyllabbau stark inhibiert ist und die Seneszenz nach Dunkelinkubation im Vergleich zum Wildtyp deutlich verzögert ist. Eine deutliche Korrelation zwischen vermindertem Chlorophyllabbau und Gehalt an Tocopherol und Fettsäurephytylester konnte in den staygreen-Mutanten pao1 und zwei unabhängigen SGR (staygreen)-RNAi-Linien nachgewiesen werden. Damit konnte eindeutig gezeigt werden, dass die Synthese von Tocopherol und der Fettsäurephytylester durch die Chlorophyllhydrolyse induziert wird. Es wurde gefolgert, dass vor allem unter Seneszenz- bzw. Stressbedingungen dieser alternative Syntheseweg von Phytol eine Rolle spielt. Dennoch kommt der Phytylsynthese durch die de novo-Isoprenoidsynthese auch eine Bedeutung zu. Nach Behandlung von stickstoffmangelgestressten Wildtyppflanzen mit dem Inhibitor Fosmidomycin, welcher die plastidäre de novo-Isoprenoidsynthese hemmt, war der Tocopherolgehalt gegenüber stickstoffmangelgestressten Kontrollpflanzen stark reduziert. Ferner konnte eine T-DNA-Insertionsmutante der Geranylgeranylreduktase (GGR) identifiziert werden. Diese Mutante kann nur auf Nährmedium überleben, hat nur wenige grüne Blätter und bildet keine Samen. Es konnte kein Phyllochinon, Chlorophyll und keine Fettsäurephytylester, jedoch geringe Mengen Tocopherol nachgewiesen werden. Der Resttocopherolgehalt wird auf die Nebenaktivität einer anderen Reduktase zurückgeführt. Weiterhin wurde nur das Geranylgeranylderivat des Chlorophylls identifiziert. Diese Ergebnisse erlauben den Schluss, dass die phytylgruppenübertragenen Enzyme der Tocopherol-, Phyllochinon- und Fettsäurephytylestersynthese eine hohe Substratspezifität für die Phytylgruppe aufweisen. Nach Fütterung von Phytol konnte in ggr Tocopherol und Chlorophyll bestimmt werden. Aufgrund dessen kann gefolgert werden, dass Chlorophyllsynthetase aus Arabidopsis sowohl Geranylgeranyl-, als auch Phytylpyrophosphat als Substrat nutzen kann und damit ein breiteres Substratspektrum aufweist.