@article{KienzlerFlehrGehneetal.2012,
  author    = {Kienzler, Andrea Altevogt Nee and Flehr, Roman and Gehne, S{\"o}ren and Kumke, Michael Uwe and Bannwarth, Willi},
  title     = {Verification and biophysical characterization of a New Three-Color Forster Resonance-Energy-Transfer (FRET) System in DNA},
  series = {Helvetica chimica acta},
  volume    = {95},
  journal   = {Helvetica chimica acta},
  number    = {4},
  publisher = {Wiley-VCH},
  address   = {Weinheim},
  issn      = {0018-019X},
  doi       = {10.1002/hlca.201100460},
  pages     = {543 -- 555},
  year      = {2012},
  abstract  = {We report on a new three-color FRET system consisting of three fluorescent dyes, i.e., of a carbostyril (=quinolin-2(1H)-one)-derived donor D, a (bathophenanthroline)ruthenium complex as a relay chromophore A1, and a Cy dye as A2 (FRET=Forster resonance-energy-transfer) (cf. Fig. 1). With their widely matching spectroscopic properties (cf. Fig. 2), the combination of these dyes yielded excellent FRET efficiencies. Furthermore, fluorescence lifetime measurements revealed that the long fluorescence lifetime of the Ru complex was transferred to the Cy dye offering the possibility to measure the whole system in a time-resolved mode. The FRET system was established on double-stranded DNA (cf. Fig. 3) but it should also be generally applicable to other biomolecules.},
  language  = {en}
}
@article{AbouzarPoghossianCherstvyetal.2012,
  author    = {Abouzar, Maryam H. and Poghossian, Arshak and Cherstvy, Andrey G. and Pedraza, Angela M. and Ingebrandt, Sven and Sch{\"o}ning, Michael J.},
  title     = {Label-free electrical detection of DNA by means of field-effect nanoplate capacitors experiments and modeling},
  series = {Physica status solidi : A, Applications and materials science},
  volume    = {209},
  journal   = {Physica status solidi : A, Applications and materials science},
  number    = {5},
  publisher = {Wiley-VCH},
  address   = {Weinheim},
  issn      = {1862-6300},
  doi       = {10.1002/pssa.201100710},
  pages     = {925 -- 934},
  year      = {2012},
  abstract  = {Label-free electrical detection of consecutive deoxyribonucleic acid (DNA) hybridization/denaturation by means of an array of individually addressable field-effect-based nanoplate silicon-on-insulator (SOI) capacitors modified with gold nanoparticles (Au-NP) is investigated. The proposed device detects charge changes on Au-NP/DNA hybrids induced by the hybridization or denaturation event. DNA hybridization was performed in a high ionic-strength solution to provide a high hybridization efficiency. On the other hand, to reduce the screening of the DNA charge by counter ions and to achieve a high sensitivity, the sensor signal induced by the hybridization and denaturation events was measured in a low ionic-strength solution. High sensor signals of about 120, 90, and 80 mV were registered after the DNA hybridization, denaturation, and re-hybridization events, respectively. Fluorescence microscopy has been applied as reference method to verify the DNA immobilization, hybridization, and denaturation processes. An electrostatic charge-plane model for potential changes at the gate surface of a nanoplate field-effect sensor induced by the DNA hybridization has been developed taking into account both the Debye length and the distance of the DNA charge from the gate surface.},
  language  = {en}
}
@phdthesis{Breitenstein2012,
  author    = {Breitenstein, Michael},
  title     = {Ortsaufgel{\"o}ster Aufbau von DNA-Nanostrukturen auf Glasoberfl{\"a}chen},
  url       = {http://nbn-resolving.de/urn:nbn:de:kobv:517-opus-61857},
  school      = {Universit{\"a}t Potsdam},
  year      = {2012},
  abstract  = {Im Fokus dieser Arbeit stand der Aufbau einer auf DNA basierenden Nanostruktur. Der universelle Vier-Buchstaben-Code der DNA erm{\"o}glicht es, Bindungen auf molekularer Ebene zu adressieren. Die chemischen und physikalischen Eigenschaften der DNA pr{\"a}destinieren dieses Makromolek{\"u}l f{\"u}r den Einsatz und die Verwendung als Konstruktionselement zum Aufbau von Nanostrukturen. Das Ziel dieser Arbeit war das Aufspannen eines DNA-Stranges zwischen zwei Fixpunkten. Hierf{\"u}r war es notwendig, eine Methode zu entwickeln, welche es erm{\"o}glicht, Funktionsmolek{\"u}le als Ankerelemente ortsaufgel{\"o}st auf eine Oberfl{\"a}che zu deponieren. Das Deponieren dieser Molek{\"u}le sollte dabei im unteren Mikrometermaßstab erfolgen, um den Abmaßen der DNA und der angestrebten Nanostruktur gerecht zu werden. Das eigens f{\"u}r diese Aufgabe entwickelte Verfahren zum ortsaufgel{\"o}sten Deponieren von Funktionsmolek{\"u}len nutzt das Bindungspaar Biotin-Neutravidin. Mit Hilfe eines Rasterkraftmikroskops (AFM) wurde eine zu einem „Stift" umfunktionierte Rasterkraftmikroskopspitze so mit der zu deponierenden „Tinte" beladen, dass das Absetzen von Neutravidin im unteren Mikrometermaßstab m{\"o}glich war. Dieses Neutravidinmolek{\"u}l {\"u}bernahm die Funktion als Bindeglied zwischen der biotinylierten Glasoberfl{\"a}che und dem eigentlichen Adressmolek{\"u}l. Das somit generierte Neutravidin-Feld konnte dann mit einem biotinylierten Adressmolek{\"u}l durch Inkubation funktionalisiert werden. Namensgebend f{\"u}r dieses Verfahren war die M{\"o}glichkeit, Neutravidin mehrmals zu deponieren und zu adressieren. Somit ließ sich sequenziell ein Mehrkomponenten-Feld aufbauen. Die Einschr{\"a}nkung, mit einem AFM nur eine Substanz deponieren zu k{\"o}nnen, wurde so umgangen. Ferner mußten Ankerelemente geschaffen werden, um die DNA an definierten Punkten immobilisieren zu k{\"o}nnen. Die Bearbeitung der DNA erfolgte mit molekularbiologischen Methoden und zielte darauf ab, einen DNA-Strang zu generieren, welcher an seinen beiden Enden komplement{\"a}re Adressequenzen enth{\"a}lt, um gezielt mit den oberfl{\"a}chenst{\"a}ndigen Ankerelementen binden zu k{\"o}nnen. Entsprechend der Geometrie der mit dem AFM erzeugten Fixpunkte und den oligonukleotidvermittelten Adressen kommt es zur Ausbildung einer definierten DNA-Struktur. Mit Hilfe von fluoreszenzmikroskopischen Methoden wurde die aufgebaute DNA-Nanostruktur nachgewiesen. Der Nachweis der nanoskaligen Interaktion von DNA-bindenden Molek{\"u}len mit der generierten DNA-Struktur wurde durch die Bindung von PNA (peptide nucleic acid) an den DNA-Doppelstrang erbracht. Diese PNA-Bindung stellt ihrerseits ein funktionales Strukturelement im Nanometermaßstab dar und wird als Nanostrukturbaustein verstanden.},
  language  = {de}
}