@phdthesis{Dippong2017,
  author    = {Dippong, Martin},
  title     = {Direkte und indirekte Hapten-selektive Immunfluoreszenzmarkierung von Hybridomzellen zur Generierung monoklonaler Antik{\"o}rper},
  school      = {Universit{\"a}t Potsdam},
  pages     = {VII, 103},
  year      = {2017},
  abstract  = {Die Hybridomtechnik zur Produktion von monoklonalen Antik{\"o}rpern erm{\"o}glichte einen großen Schritt in der Entwicklung von Immunoassays f{\"u}r die biochemische Forschung und klinische Diagnostik. Auch die Produktion von Antik{\"o}rpern gegen niedermolekulare Analyten, Haptene, typische Targets in der Lebensmittel- und Umweltanalytik, erlangte in den letzten Jahren eine immer gr{\"o}ßere Bedeutung. Im Zuge der Durchf{\"u}hrung der Hybridomtechnik werden tausende Antik{\"o}rper-sezernierende und nicht-sezernierende Zellen generiert. Die Selektion der wenigen antigenselektiven Hybridomzellen z{\"a}hlt dabei zu den herausforderndsten Schritten f{\"u}r die Antik{\"o}rpergewinnung. Bisherige Selektionsverfahren, wie die Limiting-Dilution-Klonierung in Verbindung mit Enzyme-linked Immunosorbent Assays (ELISAs), garantieren keine Monoklonalit{\"a}t und erlauben nur das Screening von einigen wenigen Zellklonen. Hingegen erm{\"o}glichen Hochdurchsatz-Selektionsmethoden, wie die Fluoreszenz-aktivierte Zellsortierung (FACS), einen sehr hohen Probendurchsatz. Eine Einzelzellablage garantiert hierbei Monoklonalit{\"a}t. Jedoch sind die daf{\"u}r erforderlichen Zellmarkierungen oftmals zellsch{\"a}digend oder aufwendig zu generieren. Auch ist bisher noch keine Markierungsmethode bekannt, die es erm{\"o}glicht, Hapten-selektive Hybridomzellen durchflusszytometrisch zu analysieren und eine FACS-Selektion durchzuf{\"u}hren. Aus diesem Grund wurden in dieser Arbeit zwei Zellmarkierungsmethoden entwickelt, die dies erm{\"o}glichen sollten. Die membranst{\"a}ndigen Antik{\"o}rper von Hybridomzellen sollten entweder direkt oder indirekt immunfluoreszenz-markiert und dadurch f{\"u}r die Durchflusszytometrie und FACS-Selektion zug{\"a}nglich gemacht werden. Die direkte Markierung wurde mittels eines Hapten-Fluorophor-Konjugats durchgef{\"u}hrt. Sie erm{\"o}glichte erstmalig den Anteil an Haptenselektiven Hybridomzellen in einer Hybridomzelllinie zu {\"u}berpr{\"u}fen. Dies konnte f{\"u}r zwei Hapten-selektive Hybridomzelllinien, die Antik{\"o}rper gegen das Hormon 17β-Estradiol und das Cardenolid Digoxigenin bilden, gezeigt werden. Durchflusszytometrie und ELISAs lieferten vergleichbare Ergebnisse. Zellen, die Hapten-selektiv markiert werden konnten, sezernierten ebenfalls Hapten-selektive Antik{\"o}rper. Des Weiteren konnte die direkte Markierung dazu genutzt werden, zwei Mykotoxin-selektive Hybridomzelllinien, welche Antik{\"o}rper gegen Aflatoxin und Zearalenon bilden, auf Monoklonalit{\"a}t zu testen. Dies ist mittels ELISA nicht m{\"o}glich. Die Markierungsmethode eignete sich jedoch nur f{\"u}r fixierte Hybridomzellen. Eine Markierung von lebenden Zellen konnte weder durchflusszytometrisch noch mittels konfokaler Laser-Scanning-Mikroskopie gezeigt werden. Dies gelang erst mit einer neu entwickelten indirekten Immunfluoreszenzmarkierung. Dabei wurden die Zellen zun{\"a}chst mit einem Hapten-Peroxidase-Konjugat inkubiert, gefolgt von einem Fluorophor-markierten anti-HRP-Antik{\"o}rper-Konjugat. Dies wurde f{\"u}r zwei Analyten, das Hormon Estron und das Antiepileptikum Carbamazepin, gezeigt. Die indirekte Markierung wurde erfolgreich dazu verwendet, Carbamazepin-selektive Hybridomzellen aus einem Fusionsansatz f{\"u}r die monoklonale Antik{\"o}rperproduktion auszusortieren. Damit wurde erstmalig eine Zellmarkierungsmethode entwickelt, die eine Hochdurchsatz-Selektion lebender Hybridomzellen aus einem Fusionsansatz erm{\"o}glicht. Sie ist nicht zellsch{\"a}digend und kann zus{\"a}tzlich zur Selektion Hapten-selektiver Plasmazellen verwendet werden.},
  language  = {de}
}
@misc{GoethelListekMesserschmidtetal.2021,
  author    = {G{\"o}thel, Markus and Listek, Martin and Messerschmidt, Katrin and Schl{\"o}r, Anja and H{\"o}now, Anja and Hanack, Katja},
  title     = {A New Workflow to Generate Monoclonal Antibodies against Microorganisms},
  series = {Mathematisch-Naturwissenschaftliche Reihe},
  journal   = {Mathematisch-Naturwissenschaftliche Reihe},
  number    = {20},
  issn      = {1866-8372},
  doi       = {10.25932/publishup-52334},
  url       = {http://nbn-resolving.de/urn:nbn:de:kobv:517-opus4-523341},
  pages     = {17},
  year      = {2021},
  abstract  = {Monoclonal antibodies are used worldwide as highly potent and efficient detection reagents for research and diagnostic applications. Nevertheless, the specific targeting of complex antigens such as whole microorganisms remains a challenge. To provide a comprehensive workflow, we combined bioinformatic analyses with novel immunization and selection tools to design monoclonal antibodies for the detection of whole microorganisms. In our initial study, we used the human pathogenic strain E. coli O157:H7 as a model target and identified 53 potential protein candidates by using reverse vaccinology methodology. Five different peptide epitopes were selected for immunization using epitope-engineered viral proteins. The identification of antibody-producing hybridomas was performed by using a novel screening technology based on transgenic fusion cell lines. Using an artificial cell surface receptor expressed by all hybridomas, the desired antigen-specific cells can be sorted fast and efficiently out of the fusion cell pool. Selected antibody candidates were characterized and showed strong binding to the target strain E. coli O157:H7 with minor or no cross-reactivity to other relevant microorganisms such as Legionella pneumophila and Bacillus ssp. This approach could be useful as a highly efficient workflow for the generation of antibodies against microorganisms.},
  language  = {en}
}
@article{GoethelListekMesserschmidtetal.2021,
  author    = {G{\"o}thel, Markus and Listek, Martin and Messerschmidt, Katrin and Schl{\"o}r, Anja and H{\"o}now, Anja and Hanack, Katja},
  title     = {A New Workflow to Generate Monoclonal Antibodies against Microorganisms},
  series = {Applied Sciences},
  volume    = {11},
  journal   = {Applied Sciences},
  number    = {20},
  publisher = {MDPI},
  address   = {Basel},
  issn      = {1454-5101},
  doi       = {10.3390/app11209359},
  pages     = {15},
  year      = {2021},
  abstract  = {Monoclonal antibodies are used worldwide as highly potent and efficient detection reagents for research and diagnostic applications. Nevertheless, the specific targeting of complex antigens such as whole microorganisms remains a challenge. To provide a comprehensive workflow, we combined bioinformatic analyses with novel immunization and selection tools to design monoclonal antibodies for the detection of whole microorganisms. In our initial study, we used the human pathogenic strain E. coli O157:H7 as a model target and identified 53 potential protein candidates by using reverse vaccinology methodology. Five different peptide epitopes were selected for immunization using epitope-engineered viral proteins. The identification of antibody-producing hybridomas was performed by using a novel screening technology based on transgenic fusion cell lines. Using an artificial cell surface receptor expressed by all hybridomas, the desired antigen-specific cells can be sorted fast and efficiently out of the fusion cell pool. Selected antibody candidates were characterized and showed strong binding to the target strain E. coli O157:H7 with minor or no cross-reactivity to other relevant microorganisms such as Legionella pneumophila and Bacillus ssp. This approach could be useful as a highly efficient workflow for the generation of antibodies against microorganisms.},
  language  = {en}
}