@phdthesis{Dippong2017,
  author    = {Dippong, Martin},
  title     = {Direkte und indirekte Hapten-selektive Immunfluoreszenzmarkierung von Hybridomzellen zur Generierung monoklonaler Antik{\"o}rper},
  school      = {Universit{\"a}t Potsdam},
  pages     = {VII, 103},
  year      = {2017},
  abstract  = {Die Hybridomtechnik zur Produktion von monoklonalen Antik{\"o}rpern erm{\"o}glichte einen großen Schritt in der Entwicklung von Immunoassays f{\"u}r die biochemische Forschung und klinische Diagnostik. Auch die Produktion von Antik{\"o}rpern gegen niedermolekulare Analyten, Haptene, typische Targets in der Lebensmittel- und Umweltanalytik, erlangte in den letzten Jahren eine immer gr{\"o}ßere Bedeutung. Im Zuge der Durchf{\"u}hrung der Hybridomtechnik werden tausende Antik{\"o}rper-sezernierende und nicht-sezernierende Zellen generiert. Die Selektion der wenigen antigenselektiven Hybridomzellen z{\"a}hlt dabei zu den herausforderndsten Schritten f{\"u}r die Antik{\"o}rpergewinnung. Bisherige Selektionsverfahren, wie die Limiting-Dilution-Klonierung in Verbindung mit Enzyme-linked Immunosorbent Assays (ELISAs), garantieren keine Monoklonalit{\"a}t und erlauben nur das Screening von einigen wenigen Zellklonen. Hingegen erm{\"o}glichen Hochdurchsatz-Selektionsmethoden, wie die Fluoreszenz-aktivierte Zellsortierung (FACS), einen sehr hohen Probendurchsatz. Eine Einzelzellablage garantiert hierbei Monoklonalit{\"a}t. Jedoch sind die daf{\"u}r erforderlichen Zellmarkierungen oftmals zellsch{\"a}digend oder aufwendig zu generieren. Auch ist bisher noch keine Markierungsmethode bekannt, die es erm{\"o}glicht, Hapten-selektive Hybridomzellen durchflusszytometrisch zu analysieren und eine FACS-Selektion durchzuf{\"u}hren. Aus diesem Grund wurden in dieser Arbeit zwei Zellmarkierungsmethoden entwickelt, die dies erm{\"o}glichen sollten. Die membranst{\"a}ndigen Antik{\"o}rper von Hybridomzellen sollten entweder direkt oder indirekt immunfluoreszenz-markiert und dadurch f{\"u}r die Durchflusszytometrie und FACS-Selektion zug{\"a}nglich gemacht werden. Die direkte Markierung wurde mittels eines Hapten-Fluorophor-Konjugats durchgef{\"u}hrt. Sie erm{\"o}glichte erstmalig den Anteil an Haptenselektiven Hybridomzellen in einer Hybridomzelllinie zu {\"u}berpr{\"u}fen. Dies konnte f{\"u}r zwei Hapten-selektive Hybridomzelllinien, die Antik{\"o}rper gegen das Hormon 17β-Estradiol und das Cardenolid Digoxigenin bilden, gezeigt werden. Durchflusszytometrie und ELISAs lieferten vergleichbare Ergebnisse. Zellen, die Hapten-selektiv markiert werden konnten, sezernierten ebenfalls Hapten-selektive Antik{\"o}rper. Des Weiteren konnte die direkte Markierung dazu genutzt werden, zwei Mykotoxin-selektive Hybridomzelllinien, welche Antik{\"o}rper gegen Aflatoxin und Zearalenon bilden, auf Monoklonalit{\"a}t zu testen. Dies ist mittels ELISA nicht m{\"o}glich. Die Markierungsmethode eignete sich jedoch nur f{\"u}r fixierte Hybridomzellen. Eine Markierung von lebenden Zellen konnte weder durchflusszytometrisch noch mittels konfokaler Laser-Scanning-Mikroskopie gezeigt werden. Dies gelang erst mit einer neu entwickelten indirekten Immunfluoreszenzmarkierung. Dabei wurden die Zellen zun{\"a}chst mit einem Hapten-Peroxidase-Konjugat inkubiert, gefolgt von einem Fluorophor-markierten anti-HRP-Antik{\"o}rper-Konjugat. Dies wurde f{\"u}r zwei Analyten, das Hormon Estron und das Antiepileptikum Carbamazepin, gezeigt. Die indirekte Markierung wurde erfolgreich dazu verwendet, Carbamazepin-selektive Hybridomzellen aus einem Fusionsansatz f{\"u}r die monoklonale Antik{\"o}rperproduktion auszusortieren. Damit wurde erstmalig eine Zellmarkierungsmethode entwickelt, die eine Hochdurchsatz-Selektion lebender Hybridomzellen aus einem Fusionsansatz erm{\"o}glicht. Sie ist nicht zellsch{\"a}digend und kann zus{\"a}tzlich zur Selektion Hapten-selektiver Plasmazellen verwendet werden.},
  language  = {de}
}
@inproceedings{DemarisGrišićHuisingaetal.2020,
  author    = {D{\´e}maris, Alise and Grišić, Ana-Marija and Huisinga, Wilhelm and Walter, Reinisch and Kloft, Charlotte},
  title     = {Evaluation of dosing strategies of anti-TNF alpha monoclonal antibodies using pharmacokinetic modelling and simulation},
  series = {Journal of Crohn's and Colitis},
  volume    = {14},
  booktitle = {Journal of Crohn's and Colitis},
  number    = {Supp. 1},
  publisher = {Oxford Univ. Press},
  address   = {Oxford},
  issn      = {1873-9946},
  doi       = {10.1093/ecco-jcc/jjz203.201},
  pages     = {S171 -- S172},
  year      = {2020},
  abstract  = {Background: Anti-TNFα monoclonal antibodies (mAbs) are a well-established treatment for patients with Crohn's disease (CD). However, subtherapeutic concentrations of mAbs have been related to a loss of response during the first year of therapy1. Therefore, an appropriate dosing strategy is crucial to prevent the underexposure of mAbs for those patients. The aim of our study was to assess the impact of different dosing strategies (fixed dose or body size descriptor adapted) on drug exposure and the target concentration attainment for two different anti-TNFα mAbs: infliximab (IFX, body weight (BW)-based dosing) and certolizumab pegol (CZP, fixed dosing). For this purpose, a comprehensive pharmacokinetic (PK) simulation study was performed. Methods: A virtual population of 1000 clinically representative CD patients was generated based on the distribution of CD patient characteristics from an in-house clinical database (n = 116). Seven dosing regimens were investigated: fixed dose and per BW, lean BW (LBW), body surface area, height, body mass index and fat-free mass. The individual body size-adjusted doses were calculated from patient generated body size descriptor values. Then, using published PK models for IFX and CZP in CD patients2,3, for each patient, 1000 concentration-time profiles were simulated to consider the typical profile of a specific patient as well as the range of possible individual profiles due to unexplained PK variability across patients. For each dosing strategy, the variability in maximum and minimum mAb concentrations (Cmax and Cmin, respectively), area under the concentration-time curve (AUC) and the per cent of patients reaching target concentration were assessed during maintenance therapy. Results: For IFX and CZP, Cmin showed the highest variability between patients (CV ≈110\% and CV ≈80\%, respectively) with a similar extent across all dosing strategies. For IFX, the per cent of patients reaching the target (Cmin = 5 µg/ml) was similar across all dosing strategies (~15\%). For CZP, the per cent of patients reaching the target average concentration of 17 µg/ml ranged substantially (52-71\%), being the highest for LBW-adjusted dosing. Conclusion: By using a PK simulation approach, different dosing regimen of IFX and CZP revealed the highest variability for Cmin, the most commonly used PK parameter guiding treatment decisions, independent upon dosing regimen. Our results demonstrate similar target attainment with fixed dosing of IFX compared with currently recommended BW-based dosing. For CZP, the current fixed dosing strategy leads to comparable percentage of patients reaching target as the best performing body size-adjusted dosing (66\% vs. 71\%, respectively).},
  language  = {en}
}
@article{HolzloehnerHanack2017,
  author    = {Holzl{\"o}hner, Pamela and Hanack, Katja},
  title     = {Generation of murine monoclonal antibodies by hybridoma technology},
  series = {JoVE : Video journal},
  journal   = {JoVE : Video journal},
  number    = {119},
  publisher = {JoVE},
  address   = {Cambridge},
  issn      = {1940-087X},
  doi       = {10.3791/54832},
  pages     = {7},
  year      = {2017},
  abstract  = {Monoclonal antibodies are universal binding molecules and are widely used in biomedicine and research. Nevertheless, the generation of these binding molecules is time-consuming and laborious due to the complicated handling and lack of alternatives. The aim of this protocol is to provide one standard method for the generation of monoclonal antibodies using hybridoma technology. This technology combines two steps. Step 1 is an appropriate immunization of the animal and step 2 is the fusion of B lymphocytes with immortal myeloma cells in order to generate hybrids possessing both parental functions, such as the production of antibody molecules and immortality. The generated hybridoma cells were then recloned and diluted to obtain stable monoclonal cell cultures secreting the desired monoclonal antibody in the culture supernatant. The supernatants were tested in enzyme-linked immunosorbent assays (ELISA) for antigen specificity. After the selection of appropriate cell clones, the cells were transferred to mass cultivation in order to produce the desired antibody molecule in large amounts. The purification of the antibodies is routinely performed by affinity chromatography. After purification, the antibody molecule can be characterized and validated for the final test application. The whole process takes 8 to 12 months of development, and there is a high risk that the antibody will not work in the desired test system.},
  language  = {en}
}